DNA 농도 계산기

소개

DNA 농도 계산기는 샘플의 DNA 농도를 정확하게 측정해야 하는 분자 생물학자, 유전학자 및 실험실 기술자에게 필수적인 도구입니다. DNA 농도 측정은 분자 생물학 실험실에서 기본적인 절차로, PCR, 시퀀싱, 클로닝 및 기타 분자 기술과 같은 다운스트림 응용 프로그램을 진행하기 전에 중요한 품질 관리 단계로 작용합니다. 이 계산기는 UV 흡광도를 기반으로 DNA 농도를 계산하며, 260nm(A260)에서의 흡광도를 사용하고, 원래 샘플의 희석을 고려하여 표준 변환 인자를 적용합니다.

사용자 친화적인 이 계산기는 샘플의 농도(ng/μL)와 총 DNA 양을 결정하는 과정을 간소화하여 수동 계산의 필요성을 없애고 수학적 오류의 위험을 줄입니다. 차세대 시퀀싱을 위한 샘플 준비, 플라스미드 준비의 정량화 또는 유전체 DNA 추출 수율 평가 등 어떤 경우든, 이 도구는 연구 및 진단 작업 흐름을 지원하기 위해 빠르고 신뢰할 수 있는 결과를 제공합니다.

DNA 농도 계산 방법

기본 원리

DNA 농도 계산은 비어-램버트 법칙(Beer-Lambert Law)에 의존합니다. 이 법칙은 용액의 흡광도가 용액 내 흡수 물질의 농도와 빛이 용액을 통과하는 경로 길이에 비례한다는 것을 명시합니다. 이중 가닥 DNA의 경우, 1.0의 흡광도(A260)에서 1cm 경로 길이의 큐벳에서 약 50 ng/μL의 농도에 해당합니다.

공식

DNA 농도는 다음 공식을 사용하여 계산됩니다:

$\text{DNA 농도 (ng/μL)} = A_{260} \times 50 \times \text{희석 계수}$

여기서:

• A260은 260nm에서의 흡광도 측정값입니다.
• 50은 이중 가닥 DNA에 대한 표준 변환 인자입니다 (A260 = 1.0에서 50 ng/μL).
• 희석 계수는 측정을 위해 원래 샘플이 희석된 비율입니다.

샘플의 총 DNA 양은 다음과 같이 계산할 수 있습니다:

$\text{총 DNA (μg)} = \frac{\text{농도 (ng/μL)} \times \text{부피 (μL)}}{1000}$

변수 이해하기

1. 260nm에서의 흡광도(A260):

   • 이는 DNA 샘플이 260nm 파장에서 얼마나 많은 UV 빛을 흡수하는지를 측정한 것입니다.
   • DNA 뉴클레오타이드(특히 질소 염기)는 260nm에서 UV 빛을 흡수합니다.
   • 흡광도가 높을수록 용액 내 DNA가 더 많이 존재합니다.

2. 변환 인자(50):

   • A260 = 1.0에서 이중 가닥 DNA에 대한 표준 변환 인자는 50 ng/μL입니다.
   • 단일 가닥 DNA의 경우 인자는 33 ng/μL입니다.
   • RNA의 경우 인자는 40 ng/μL입니다.
   • 올리고뉴클레오타이드의 경우, 서열에 따라 인자가 달라집니다.

3. 희석 계수:

   • 샘플이 측정 전에 희석된 경우(예: 1부 샘플 대 9부 완충액 = 희석 계수 10).
   • 계산 방법: (샘플의 부피 + 희석액의 부피) ÷ 샘플의 부피.
   • 원래의 비희석 샘플에서의 농도를 결정하는 데 사용됩니다.

4. 부피:

   • DNA 용액의 총 부피(μL)입니다.
   • 샘플의 총 DNA 양을 계산하는 데 사용됩니다.

이 계산기를 사용하는 방법

DNA 농도를 정확하게 결정하기 위해 다음 단계를 따르십시오:

1. 샘플 준비:

   • DNA 샘플이 제대로 용해되고 혼합되었는지 확인합니다.
   • 예상 농도가 높은 경우, 측정이 선형 범위 내에 있도록 희석을 준비합니다(일반적으로 A260은 0.1에서 1.0 사이).

2. 흡광도 측정:

   • 분광 광도계 또는 나노드롭 장치를 사용하여 260nm에서의 흡광도를 측정합니다.
   • 순도를 평가하기 위해 280nm에서의 흡광도도 측정합니다(A260/A280 비율).
   • DNA를 용해/희석하는 데 사용된 동일한 완충액을 기준으로 사용합니다.

3. 계산기에 값 입력:

   • 측정된 A260 값을 "260nm에서의 흡광도" 필드에 입력합니다.
   • DNA 용액의 총 부피를 μL 단위로 입력합니다.
   • 희석 계수를 입력합니다(희석이 없었다면 1을 사용).

4. 결과 해석:

   • 계산기는 DNA 농도를 ng/μL로 표시합니다.
   • 샘플의 총 DNA 양이 μg로 표시됩니다.
   • 이러한 값을 사용하여 다운스트림 응용 프로그램에 필요한 적절한 부피를 결정합니다.

5. DNA 순도 평가 (A280이 측정된 경우):

   • A260/A280 비율이 ~1.8이면 순수한 DNA를 나타냅니다.
   • 낮은 비율은 단백질 오염을 나타낼 수 있습니다.
   • 높은 비율은 RNA 오염을 나타낼 수 있습니다.

사용 사례

DNA 농도 측정은 수많은 분자 생물학 및 생명공학 응용 프로그램에서 중요합니다:

분자 클로닝

DNA 조각을 벡터에 연결하기 전에 정확한 농도를 아는 것은 최적의 삽입 대 벡터 비율을 계산하는 데 도움이 되어 변환 효율을 극대화합니다. 예를 들어, 3:1의 몰 비율의 삽입 대 벡터가 최상의 결과를 낳는 경우가 많으며, 이는 두 구성 요소의 농도 측정을 정확히 요구합니다.

PCR 및 qPCR

PCR 반응은 일반적으로 최적의 증폭을 위해 1-10 ng의 템플릿 DNA를 필요로 합니다. 너무 적은 DNA는 증폭 실패를 초래할 수 있으며, 너무 많은 DNA는 반응을 억제할 수 있습니다. 정량적 PCR(qPCR)의 경우, 정확한 DNA 정량화가 필요하여 정확한 표준 곡선 및 신뢰할 수 있는 정량화를 보장합니다.

차세대 시퀀싱(NGS)

NGS 라이브러리 준비 프로토콜은 일반적으로 정확한 DNA 입력량을 지정하며, 플랫폼 및 응용 프로그램에 따라 1-500 ng의 범위에 해당합니다. 정확한 농도 측정은 성공적인 라이브러리 준비와 다중화된 시퀀싱 실행에서 샘플의 균형 잡힌 표현을 보장하는 데 필수적입니다.

전이 실험

DNA를 진핵 세포에 도입할 때 최적의 DNA 양은 세포 유형 및 전이 방법에 따라 다릅니다. 일반적으로 6웰 플레이트 형식에서 0.5-5 μg의 플라스미드 DNA가 사용되며, 실험을 표준화하기 위해 정확한 농도 측정이 필요합니다.

법의학 DNA 분석

법의학 응용 프로그램에서 DNA 샘플은 종종 제한적이고 귀중합니다. 정확한 정량화는 법의학 과학자가 프로파일링에 충분한 DNA가 있는지 결정하고 후속 분석에 사용될 DNA 양을 표준화하는 데 도움을 줍니다.

제한 효소 소화

제한 효소는 DNA의 μg당 특정 활성 단위를 가지고 있습니다. 정확한 DNA 농도를 아는 것은 효소 대 DNA 비율을 적절히 설정하는 데 도움이 되어 비특이적 절단(스타 활성)을 방지합니다.

흡광도 측정의 대안

UV 분광광도법은 DNA 정량화의 가장 일반적인 방법이지만 몇 가지 대안이 있습니다:

1. 형광법:

   • PicoGreen, Qubit 및 SYBR Green과 같은 형광 염료는 이중 가닥 DNA에 특이적으로 결합합니다.
   • 분광광도법보다 더 민감합니다(최소 25 pg/mL 감지 가능).
   • 단백질, RNA 또는 자유 뉴클레오타이드와 같은 오염물의 영향을 덜 받습니다.
   • 형광계 및 특정 시약이 필요합니다.

2. 아가로스 겔 전기영동:

   • DNA는 알려진 농도의 표준과 비교하여 밴드 강도로 정량화할 수 있습니다.
   • DNA 크기 및 무결성에 대한 정보를 동시에 제공합니다.
   • 분광광도법 또는 형광법보다 정확성이 떨어집니다.
   • 시각적 확인을 위한 유용한 방법이지만 시간이 소요됩니다.

3. 실시간 PCR:

   • 특정 DNA 서열을 정량화하는 데 매우 민감한 방법입니다.
   • 극히 낮은 농도(몇 개 복제까지)도 감지할 수 있습니다.
   • 특정 프라이머가 필요하며 더 복잡한 장비가 필요합니다.
   • 서열 특이적인 정량화가 필요할 때 사용됩니다.

4. 디지털 PCR:

   • 표준 곡선 없이 절대 정량화합니다.
   • 희귀한 타겟에 대해 매우 정밀합니다.
   • 비싸고 전문 장비가 필요합니다.
   • 희귀 변이 탐지 및 복제 수 변동 분석에 사용됩니다.

DNA 농도 측정의 역사

DNA 농도를 정확하게 측정하는 능력은 분자 생물학의 발전과 함께 크게 진화했습니다:

초기 방법 (1950년대-1960년대)

1953년 Watson과 Crick이 DNA 구조를 발견한 후, 과학자들은 DNA를 분리하고 정량화하는 방법을 개발하기 시작했습니다. 초기 접근법은 DNA의 데옥시리보스 당과 반응하여 파란색을 생성하는 디페닐아민 반응과 같은 색도법에 의존했습니다. 이러한 방법은 상대적으로 민감도가 낮고 간섭에 취약했습니다.

분광광도법 시대 (1970년대)

1970년대에 핵산 정량화에 UV 분광광도법이 널리 사용되기 시작했습니다. 과학자들은 DNA가 260nm에서 UV 빛을 흡수한다는 것을 발견하였고, 흡광도와 농도 간의 관계가 특정 범위 내에서 선형적이라는 것을 발견했습니다. A260 = 1.0에서 이중 가닥 DNA에 대한 50 ng/μL의 변환 인자는 이 시기에 확립되었습니다.

형광법 혁명 (1980년대-1990년대)

1980년대와 1990년대에 DNA 특이적 형광 염료의 개발은 특히 희석 샘플에 대한 DNA 정량화에서 혁신을 가져왔습니다. Hoechst 염료와 나중에 PicoGreen은 분광광도법으로는 불가능한 훨씬 더 민감한 검출을 가능하게 했습니다. 이러한 방법은 PCR의 출현과 함께 특히 중요해졌으며, 이는 종종 미세한 DNA 양의 정량화를 요구했습니다.

현대 시대 (2000년대-현재)

2000년대 초반 나노드롭과 같은 마이크로 볼륨 분광광도계의 도입은 단 0.5-2 μL의 샘플만으로도 DNA 농도를 측정할 수 있게 하여 일상적인 DNA 정량화의 변화를 가져왔습니다. 이 기술은 희석 및 큐벳의 필요성을 없애주어 과정을 더 빠르고 편리하게 만들었습니다.

오늘날, 디지털 PCR 및 차세대 시퀀싱과 같은 고급 기술은 특정 서열의 절대 정량화 및 단일 분자 검출의 경계를 더욱 확장했습니다. 그러나 수십 년 전에 확립된 기본적인 분광광도법 원리는 전 세계 실험실에서 일상적인 DNA 농도 측정의 기초로 남아 있습니다.

실용적인 예

DNA 농도 계산의 몇 가지 실용적인 예를 살펴보겠습니다:

예제 1: 표준 플라스미드 준비

연구자가 정제된 플라스미드를 얻었고 다음과 같은 측정값을 기록했습니다:

• A260 읽기: 0.75
• 희석: 1:10 (희석 계수 = 10)
• DNA 용액의 부피: 50 μL

계산:

• 농도 = 0.75 × 50 × 10 = 375 ng/μL
• 총 DNA = (375 × 50) ÷ 1000 = 18.75 μg

예제 2: 유전체 DNA 추출

혈액에서 유전체 DNA를 추출한 후:

• A260 읽기: 0.15
• 희석 없음 (희석 계수 = 1)
• DNA 용액의 부피: 200 μL

계산:

• 농도 = 0.15 × 50 × 1 = 7.5 ng/μL
• 총 DNA = (7.5 × 200) ÷ 1000 = 1.5 μg

예제 3: 시퀀싱을 위한 DNA 준비

시퀀싱 프로토콜이 정확히 500 ng의 DNA를 요구합니다:

• DNA 농도: 125 ng/μL
• 필요한 양: 500 ng

필요한 부피 = 500 ÷ 125 = 4 μL의 DNA 용액

코드 예제

다양한 프로그래밍 언어에서 DNA 농도를 계산하는 방법에 대한 예제입니다:

1' DNA 농도에 대한 Excel 공식
2=A260*50*희석계수
3
4' μg 단위로 총 DNA 양에 대한 Excel 공식
5=(A260*50*희석계수*부피)/1000
6
7' A260=0.5, 희석계수=2, 부피=100이 있는 셀의 예
8=0.5*50*2*100/1000
9' 결과: 5 μg
10

1def calculate_dna_concentration(absorbance, dilution_factor=1):
2    """
3    DNA 농도를 ng/μL로 계산합니다.
4    
5    매개변수:
6    absorbance (float): 260nm에서의 흡광도 읽기
7    dilution_factor (float): 샘플의 희석 계수
8    
9    반환값:
10    float: ng/μL 단위의 DNA 농도
11    """
12    return absorbance * 50 * dilution_factor
13
14def calculate_total_dna(concentration, volume_ul):
15    """
16    μg 단위로 총 DNA 양을 계산합니다.
17    
18    매개변수:
19    concentration (float): ng/μL 단위의 DNA 농도
20    volume_ul (float): DNA 용액의 부피(μL)
21    
22    반환값:
23    float: μg 단위의 총 DNA 양
24    """
25    return (concentration * volume_ul) / 1000
26
27# 예제 사용
28absorbance = 0.8
29dilution_factor = 5
30volume = 75
31
32concentration = calculate_dna_concentration(absorbance, dilution_factor)
33total_dna = calculate_total_dna(concentration, volume)
34
35print(f"DNA 농도: {concentration:.2f} ng/μL")
36print(f"총 DNA: {total_dna:.2f} μg")
37

1function calculateDNAConcentration(absorbance, dilutionFactor = 1) {
2  // ng/μL 단위의 DNA 농도를 반환합니다.
3  return absorbance * 50 * dilutionFactor;
4}
5
6function calculateTotalDNA(concentration, volumeUL) {
7  // μg 단위의 총 DNA 양을 반환합니다.
8  return (concentration * volumeUL) / 1000;
9}
10
11// 예제 사용
12const absorbance = 0.65;
13const dilutionFactor = 2;
14const volume = 100;
15
16const concentration = calculateDNAConcentration(absorbance, dilutionFactor);
17const totalDNA = calculateTotalDNA(concentration, volume);
18
19console.log(`DNA 농도: ${concentration.toFixed(2)} ng/μL`);
20console.log(`총 DNA: ${totalDNA.toFixed(2)} μg`);
21

1public class DNACalculator {
2    /**
3     * ng/μL 단위의 DNA 농도를 계산합니다.
4     * 
5     * @param absorbance 260nm에서의 흡광도 읽기
6     * @param dilutionFactor 샘플의 희석 계수
7     * @return ng/μL 단위의 DNA 농도
8     */
9    public static double calculateDNAConcentration(double absorbance, double dilutionFactor) {
10        return absorbance * 50 * dilutionFactor;
11    }
12    
13    /**
14     * μg 단위의 총 DNA 양을 계산합니다.
15     * 
16     * @param concentration ng/μL 단위의 DNA 농도
17     * @param volumeUL DNA 용액의 부피(μL)
18     * @return μg 단위의 총 DNA 양
19     */
20    public static double calculateTotalDNA(double concentration, double volumeUL) {
21        return (concentration * volumeUL) / 1000;
22    }
23    
24    public static void main(String[] args) {
25        double absorbance = 0.42;
26        double dilutionFactor = 3;
27        double volume = 150;
28        
29        double concentration = calculateDNAConcentration(absorbance, dilutionFactor);
30        double totalDNA = calculateTotalDNA(concentration, volume);
31        
32        System.out.printf("DNA 농도: %.2f ng/μL%n", concentration);
33        System.out.printf("총 DNA: %.2f μg%n", totalDNA);
34    }
35}
36

1# DNA 농도 계산을 위한 R 함수
2
3calculate_dna_concentration <- function(absorbance, dilution_factor = 1) {
4  # ng/μL 단위의 DNA 농도를 반환합니다.
5  return(absorbance * 50 * dilution_factor)
6}
7
8calculate_total_dna <- function(concentration, volume_ul) {
9  # μg 단위의 총 DNA 양을 반환합니다.
10  return((concentration * volume_ul) / 1000)
11}
12
13# 예제 사용
14absorbance <- 0.35
15dilution_factor <- 4
16volume <- 200
17
18concentration <- calculate_dna_concentration(absorbance, dilution_factor)
19total_dna <- calculate_total_dna(concentration, volume)
20
21cat(sprintf("DNA 농도: %.2f ng/μL\n", concentration))
22cat(sprintf("총 DNA: %.2f μg\n", total_dna))
23

자주 묻는 질문

DNA 농도와 DNA 순도의 차이는 무엇인가요?

DNA 농도는 용액 내에 존재하는 DNA의 양을 나타내며, 일반적으로 ng/μL 또는 μg/mL로 측정됩니다. 이는 얼마나 많은 DNA가 있는지를 알려주지만 품질을 나타내지는 않습니다. DNA 순도는 DNA 샘플 내 오염물의 존재를 평가하며, 일반적으로 A260/A280(단백질 오염) 및 A260/A230(유기 화합물 오염) 비율로 측정됩니다. 순수한 DNA는 일반적으로 A260/A280 비율이 ~1.8입니다.

DNA, RNA 및 단백질에 대한 변환 인자가 다른 이유는 무엇인가요?

변환 인자는 각 생체 분자가 고유한 소광 계수(빛을 흡수하는 능력)를 가지기 때문에 다릅니다. 이중 가닥 DNA는 A260=1.0에서 50 ng/μL의 변환 인자를 가지며, 단일 가닥 DNA는 33 ng/μL, RNA는 40 ng/μL입니다. 단백질의 경우(280nm에서 측정) 평균적으로 약 1 mg/mL에서 A280=1.0이지만, 이 값은 다양합니다. 이러한 차이는 뉴클레오타이드 또는 아미노산의 화학적 조성과 그들의 흡광도 특성의 차이에서 발생합니다.

분광광도법 DNA 정량화의 정확도는 얼마나 되나요?

분광광도법 DNA 정량화는 일반적으로 선형 범위 내에서(일반적으로 A260은 0.1에서 1.0 사이) 약 ±3-5%의 정밀도로 정확합니다. 그러나 매우 낮은 농도(5 ng/μL 이하)에서는 정확도가 떨어지며, 단백질, RNA, 자유 뉴클레오타이드 또는 특정 완충액과 같은 오염물의 영향을 받을 수 있습니다. 희석 샘플이나 높은 순도가 필요한 경우에는 Qubit 또는 PicoGreen과 같은 형광법이 권장됩니다.

A260/A280 비율을 어떻게 해석하나요?

A260/A280 비율은 DNA 샘플의 단백질 오염에 대한 순도를 나타냅니다:

• 비율이 ~1.8이면 일반적으로 "순수"한 DNA를 나타냅니다.
• 비율이 1.8보다 낮으면 단백질 오염을 나타낼 수 있습니다.
• 비율이 2.0 이상이면 RNA 오염을 나타낼 수 있습니다.
• 용액의 pH 및 이온 강도도 이 비율에 영향을 미칠 수 있습니다.

이 비율은 품질 검사의 유용한 지표이지만, 다른 오염물이나 DNA 분해가 이 비율에 영향을 미치지 않을 수 있으므로 기능적인 DNA를 보장하지는 않습니다.

색이 있는 용액에서 DNA 농도를 측정할 수 있나요?

분광광도법을 사용하여 색이 있는 용액에서 DNA 농도를 측정하는 것은 어려울 수 있습니다. 색이 260nm에서 흡수되면 DNA 측정에 간섭을 줄 수 있습니다. 이러한 경우:

1. 비정상적인 흡광도 패턴을 확인하기 위해 파장 스캔(220-320nm)을 수행합니다.
2. 샘플 색상에 덜 영향을 받는 형광법을 사용합니다.
3. 색이 있는 화합물을 제거하기 위해 DNA를 추가로 정제합니다.
4. 간섭 화합물의 흡광도 스펙트럼이 알려져 있는 경우 수학적 보정을 적용합니다.

DNA 농도 측정을 위한 최소 부피는 얼마인가요?

최소 부피는 사용되는 장치에 따라 다릅니다:

• 전통적인 큐벳이 있는 분광광도계는 일반적으로 50-100 μL가 필요합니다.
• 나노드롭과 같은 마이크로 볼륨 분광광도계는 단 0.5-2 μL만 필요합니다.
• 형광법은 일반적으로 시약 부피와 함께 1-20 μL의 샘플이 필요합니다.
• 마이크로플레이트 리더는 일반적으로 웰당 100-200 μL를 사용합니다.

마이크로 볼륨 분광광도계는 귀중한 샘플의 최소 부피 요구 사항으로 인해 DNA 정량화에서 혁신을 가져왔습니다.

희석 계수를 어떻게 계산하나요?

희석 계수는 다음과 같이 계산됩니다:

$\text{희석 계수} = \frac{\text{총 부피 (샘플 + 희석액)}}{\text{샘플 부피}}$

예를 들어:

• 1 μL의 DNA를 99 μL의 완충액에 추가하면 희석 계수는 100입니다.
• 5 μL의 DNA를 45 μL의 완충액에 추가하면 희석 계수는 10입니다.
• 비희석 DNA를 사용할 경우 희석 계수는 1입니다.

측정을 위한 기준으로 사용할 때는 항상 희석에 사용된 동일한 완충액을 사용해야 합니다.

다른 농도 단위 간의 변환은 어떻게 하나요?

일반적인 DNA 농도 단위 변환:

• 1 ng/μL = 1 μg/mL
• 1 μg/mL = 0.001 mg/mL
• 1 ng/μL = 1000 pg/μL
• 1 μM의 1000 bp DNA 조각 ≈ 660 ng/μL

DNA 조각의 질량 농도(ng/μL)에서 몰 농도(nM)로 변환하려면:

$\text{농도 (nM)} = \frac{\text{농도 (ng/μL)} \times 10^6}{\text{DNA 길이 (bp)} \times 660}$

부정확한 DNA 농도 측정의 원인은 무엇인가요?

부정확한 DNA 농도 측정의 원인은 여러 가지가 있습니다:

1. 오염: 단백질, 페놀, 구아니딘 또는 기타 추출 시약이 흡광도에 영향을 줄 수 있습니다.
2. 기포: 빛 경로에 있는 공기 기포가 잘못된 판독값을 초래할 수 있습니다.
3. DNA 분해: 분해된 DNA는 흡광도 특성이 변경될 수 있습니다.
4. 부적절한 기준 설정: DNA를 용해하는 데 사용된 완충액과 다른 완충액을 기준으로 사용할 경우.
5. 비균일한 용액: 제대로 혼합되지 않은 DNA 용액은 일관되지 않은 판독값을 제공합니다.
6. 장비 보정: 보정되지 않았거나 더러운 분광광도계는 신뢰할 수 없는 결과를 생성합니다.
7. 선형 범위를 벗어난 측정: 매우 높은 또는 매우 낮은 흡광도 값은 정확하지 않을 수 있습니다.

이 계산기를 RNA 농도에 사용할 수 있나요?

이 계산기는 이중 가닥 DNA에 최적화되어 있지만, RNA에 대해서도 다음과 같이 조정할 수 있습니다:

1. A260을 일반적으로 측정합니다.
2. 50 대신 40을 곱합니다( RNA에 대한 변환 인자).
3. 적절한 희석 계수를 적용합니다.

RNA의 공식은 다음과 같습니다: $\text{RNA 농도 (ng/μL)} = A_{260} \times 40 \times \text{희석 계수}$

참고 문헌

1. Gallagher, S. R., & Desjardins, P. R. (2006). 흡광도 및 형광 분광법으로 DNA 및 RNA 정량화. Current Protocols in Molecular Biology, 76(1), A-3D.

2. Sambrook, J., & Russell, D. W. (2001). 분자 클로닝: 실험실 매뉴얼 (3판). Cold Spring Harbor Laboratory Press.

3. Manchester, K. L. (1995). 순도 측정의 A260/A280 비율의 가치. BioTechniques, 19(2), 208-210.

4. Wilfinger, W. W., Mackey, K., & Chomczynski, P. (1997). 흡광도 비율에 대한 pH 및 이온 강도의 영향. BioTechniques, 22(3), 474-481.

5. Desjardins, P., & Conklin, D. (2010). 나노드롭 마이크로 볼륨으로 핵산 정량화. Journal of Visualized Experiments, (45), e2565.

6. Nakayama, Y., Yamaguchi, H., Einaga, N., & Esumi, M. (2016). DNA 결합 형광 염료를 사용한 DNA 정량화의 함정 및 제안된 해결책. PLOS ONE, 11(3), e0150528.

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8. Huberman, J. A. (1995). 240nm에서의 핵산 흡광도 측정의 중요성. BioTechniques, 18(4), 636.

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