Lewati ke konten

Kalkulator Kelarutan Protein - Alat pH & Suhu Gratis

Hitung kelarutan protein dalam berbagai pelarut berdasarkan pH, suhu, dan kekuatan ion. Prediksi pelarutan untuk albumin, lisozim, insulin, dan lainnya. Alat gratis untuk peneliti.

Kalkulator Kelarutan Protein

Hasil Kelarutan

Kelarutan Terkalkulasi
500mg/mL
Kategori Kelarutan: Sangat Larut

Visualisasi Kelarutan

RendahTinggi

Bagaimana kelarutan dihitung?

Kelarutan protein dihitung berdasarkan hidrofobisitas protein, polaritas pelarut, suhu, pH, dan kekuatan ion. Rumus ini memperhitungkan bagaimana faktor-faktor tersebut berinteraksi untuk menentukan konsentrasi maksimum protein yang dapat larut dalam pelarut yang diberikan.
Kalkulator pemuatan...
📚

Dokumentasi

Kalkulator kelarutan protein memperkirakan konsentrasi tertinggi protein yang tetap terlarut dalam pelarut pada pH, suhu, dan kekuatan ion tertentu. Kalkulator ini mengubah kimia dasar menjadi satu angka, dalam miligram protein per mililiter pelarut.

Kelarutan protein penting dalam biokimia, formulasi obat, dan ilmu pangan. Protein yang tidak dapat tetap terlarut akan membentuk agregat atau endapan, yang dapat merusak eksperimen atau membuat obat tidak dapat disuntikkan.

Cara menghitung kelarutan protein

Kelarutan bergantung pada lima hal: titik isoelektrik protein (pH saat muatan bersihnya nol), titik lelehnya (suhu saat protein mulai membuka lipatan), konstanta dielektrik pelarut (ukuran seberapa baik pelarut memisahkan partikel bermuatan), pH larutan, dan kekuatan ion (ukuran banyaknya garam terlarut).

Kalkulator memulai dari kelarutan setiap protein yang telah diketahui dalam air pada kondisi acuan: 25 °C, pH 7,0, dan kekuatan ion sebesar 0,15 M (kira-kira kadar garam dalam darah). Kemudian, nilai acuan tersebut dikalikan dengan empat rasio, masing-masing untuk kondisi yang berubah.

Rumus kelarutan protein

S=Sref×fpH(pH)fpH(7.0)×fionic(I)fionic(0.15)×ftemp(T)ftemp(25)×fsolvent(ε)S = S_{ref} \times \frac{f_{pH}(pH)}{f_{pH}(7.0)} \times \frac{f_{ionic}(I)}{f_{ionic}(0.15)} \times \frac{f_{temp}(T)}{f_{temp}(25)} \times f_{solvent}(\varepsilon)

  • SrefS_{ref} adalah kelarutan protein yang telah diketahui dalam air pada kondisi acuan, dalam mg/mL.
  • fpH(pH)=1+9(1−e−∣pH−pI∣)f_{pH}(pH) = 1 + 9\left(1 - e^{-|pH - pI|}\right), dengan pIpI sebagai titik isoelektrik protein. Kelarutan paling rendah pada titik isoelektrik dan meningkat saat pH menjauhi titik tersebut, lalu mendatar dalam selisih beberapa satuan pH.
  • fionic(I)=10(0.8I1+1.5I−I)f_{ionic}(I) = 10^{\left(\frac{0.8\sqrt{I}}{1 + 1.5\sqrt{I}} - I\right)}, dengan II sebagai kekuatan ion dalam mol per liter. Pada kadar garam rendah, suku ini sedikit meningkatkan kelarutan (“salting-in”). Pada kadar garam tinggi, suku ini menurunkan kelarutan (“salting-out”).
  • ftemp(T)=e0.01(T−25)×11+e(T−Tm)/3f_{temp}(T) = e^{0.01(T-25)} \times \dfrac{1}{1 + e^{(T - T_m)/3}}, dengan TmT_m sebagai suhu denaturasi protein dalam °C. Kelarutan meningkat perlahan seiring kenaikan suhu, kemudian turun tajam saat suhu mendekati TmT_m dan protein mulai membuka lipatan.
  • fsolvent(ε)=10−2000(1ε2−178.42)f_{solvent}(\varepsilon) = 10^{-2000\left(\frac{1}{\varepsilon^2} - \frac{1}{78.4^2}\right)}, dengan ε\varepsilon sebagai konstanta dielektrik pelarut. Air memiliki konstanta dielektrik sebesar 78,4, sehingga suku ini bernilai 1 dalam air. Pelarut yang memisahkan muatan kurang efektif daripada air, seperti etanol, menurunkan kelarutan.

Nilai acuan yang digunakan kalkulator

ProteinTitik isoelektrik (pI)Kelarutan dalam air pada 25 °C, pH 7,0 (mg/mL)Titik leleh (°C)
Albumin4,750063
Insulin5,32070
Lisozim11,3525072
Hemoglobin6,833065
Mioglobin7,430080
Kolagen9,30,540
Kasein4,6100120
Fibrinogen5,52554
PelarutKonstanta dielektrik
Air78,4
Dapar Tris77,5
Dapar fosfat76,0
DMSO46,7
Gliserol42,5
Metanol32,7
Etanol24,5
Aseton20,7

Kategori kelarutan

Hasil (mg/mL)Kategori
Di bawah 1Tidak larut
1 hingga 10Sedikit larut
10 hingga 30Cukup larut
30 hingga 60Larut
60 atau lebihSangat larut

Contoh: albumin dalam dapar fosfat

Tentukan kelarutan albumin dalam dapar fosfat pada 25 °C, pH 7,4, dan kekuatan ion sebesar 0,15 M.

Nilai acuan albumin adalah pI=4.7pI = 4.7, Sref=500S_{ref} = 500 mg/mL, dan Tm=63°CT_m = 63°C. Dapar fosfat memiliki konstanta dielektrik sebesar 76,0.

  1. Suku pH: fpH(7.4)=1+9(1−e−2.7)=9.3952f_{pH}(7.4) = 1 + 9(1 - e^{-2.7}) = 9.3952. fpH(7.0)=1+9(1−e−2.3)=9.0977f_{pH}(7.0) = 1 + 9(1 - e^{-2.3}) = 9.0977. Rasio: 9.3952/9.0977=1.03279.3952 / 9.0977 = 1.0327.
  2. Suku ionik: kekuatan ion (0,15 M) sama dengan nilai acuan, sehingga rasionya adalah 1.
  3. Suku suhu: suhu (25 °C) sama dengan nilai acuan, sehingga rasionya adalah 1.
  4. Suku pelarut: fsolvent(76.0)=10−2000(1/76.02−1/78.42)=0.9531f_{solvent}(76.0) = 10^{-2000(1/76.0^2 - 1/78.4^2)} = 0.9531.

S=500×1.0327×1×1×0.9531≈492.12 mg/mLS = 500 \times 1.0327 \times 1 \times 1 \times 0.9531 \approx 492.12\text{ mg/mL}

Kalkulator melaporkan 492,12 mg/mL, yang termasuk kategori “sangat larut”.

Contoh: lisozim dalam gliserol pada suhu rendah

Tentukan kelarutan lisozim dalam larutan gliserol pada 4 °C, pH 5,0, dan kekuatan ion sebesar 0,1 M. Kondisi ini serupa dengan penyimpanan enzim dalam keadaan dingin.

Nilai acuan lisozim adalah pI=11.35pI = 11.35, Sref=250S_{ref} = 250 mg/mL, dan Tm=72°CT_m = 72°C. Gliserol memiliki konstanta dielektrik sebesar 42,5.

  1. Suku pH: perubahan dari pH 7,0 ke pH 5,0 (keduanya jauh di bawah pI sebesar 11,35) hanya sedikit mengubah suku pH. Rasio: 9.9843/9.8838=1.01029.9843 / 9.8838 = 1.0102.
  2. Suku ionik: penurunan kekuatan ion dari 0,15 M menjadi 0,1 M sedikit meningkatkan kelarutan melalui proses salting-in. Rasio: 1.1793/1.1117=1.06071.1793 / 1.1117 = 1.0607.
  3. Istilah suhu: pendinginan dari 25 °C hingga 4 °C, jauh di bawah titik leleh, menurunkan istilah tersebut. Rasio: 0,8106.
  4. Suku pelarut: fsolvent(42.5)=10−2000(1/42.52−1/78.42)=0.1652f_{solvent}(42.5) = 10^{-2000(1/42.5^2 - 1/78.4^2)} = 0.1652.

S=250×1.0102×1.0607×0.8106×0.1652≈35.88 mg/mLS = 250 \times 1.0102 \times 1.0607 \times 0.8106 \times 0.1652 \approx 35.88\text{ mg/mL}

Kalkulator melaporkan 35,88 mg/mL, yang termasuk kategori “larut”. Konstanta dielektrik gliserol yang rendah, bukan suhu dingin, yang menurunkan hasil dari nilai acuan.

Cara menggunakan kalkulator kelarutan protein

  1. Pilih protein dari daftar: albumin, insulin, lisozim, hemoglobin, mioglobin, kolagen, kasein, atau fibrinogen.
  2. Pilih pelarut: air, dapar fosfat, dapar Tris, gliserol, DMSO, metanol, etanol, atau aseton.
  3. Masukkan suhu dalam °C (0 hingga 100), pH (0 hingga 14), dan kekuatan ion dalam molar (0 hingga 2).
  4. Baca kelarutan yang dihitung dalam mg/mL beserta kategorinya. Bilah di bawah hasil menunjukkan nilai pada skala 0 hingga 100 mg/mL, dan terisi penuh pada 100 mg/mL atau lebih.

Faktor yang memengaruhi kelarutan protein

pH dan titik isoelektrik. Setiap protein memiliki titik isoelektrik, yaitu pH saat permukaannya tidak memiliki muatan listrik bersih. Pada pH tersebut, molekul protein tidak saling tolak, sehingga lebih mudah menggumpal dan mengendap dari larutan. Mengubah pH menjauhi titik isoelektrik, ke arah mana pun, memberikan muatan bersih pada protein. Molekul bermuatan saling tolak, sehingga tetap terpisah dan terlarut.

Kekuatan ion. Ion garam terlarut mengelilingi gugus bermuatan pada permukaan protein. Pada konsentrasi rendah hingga sedang, ion-ion ini menangkal muatan yang jika tidak terlindungi akan menarik dua molekul protein satu sama lain, sehingga meningkatkan kelarutan. Fenomena ini disebut salting-in. Pada konsentrasi garam tinggi, ion bersaing dengan protein untuk mendapatkan molekul air dan menghilangkan lapisan air yang membuat protein tetap terlarut. Fenomena ini disebut salting-out dan menjadi dasar metode pemurnian umum yang menggunakan amonium sulfat untuk mengendapkan protein dari campuran.

Suhu. Pemanasan larutan umumnya meningkatkan kelarutan sampai batas tertentu. Saat suhu mendekati titik leleh protein, protein mulai membuka lipatan. Proses ini memaparkan bagian hidrofobik (yang menolak air) pada protein, yang biasanya tersembunyi di bagian dalam struktur terlipatnya. Bagian yang terbuka tersebut saling menempel dan menyebabkan agregasi, sehingga kelarutan turun tajam di sekitar dan di atas titik leleh.

Pelarut. Konstanta dielektrik pelarut mengukur seberapa efektif pelarut melemahkan tarikan listrik antara partikel bermuatan. Air memiliki konstanta dielektrik tinggi dan memisahkan muatan dengan baik. Karena itu, sebagian besar protein lebih mudah larut dalam air daripada dalam pelarut organik seperti etanol atau aseton. Pelarut dengan konstanta dielektrik rendah memungkinkan muatan berlawanan pada molekul protein yang berbeda saling menarik lebih kuat, sehingga mendorong agregasi.

Keterbatasan

Kalkulator ini menggunakan model sederhana yang dibangun berdasarkan sejumlah kecil protein acuan dan pelarut standar. Model ini tidak memperhitungkan kemurnian protein, bahan tambahan seperti deterjen atau penstabil, maupun komponen dapar yang tidak umum. Hasilnya merupakan perkiraan untuk merencanakan eksperimen, bukan pengganti pengukuran kelarutan secara langsung di laboratorium.

Pertanyaan yang sering diajukan

Apa itu kelarutan protein? Kelarutan protein adalah konsentrasi maksimum protein yang tetap sepenuhnya terlarut dalam pelarut tanpa membentuk agregat atau endapan yang terlihat.

Mengapa protein paling sedikit larut pada titik isoelektriknya? Pada titik isoelektrik, protein tidak memiliki muatan listrik bersih, sehingga molekul protein tidak lagi saling tolak secara listrik. Tanpa gaya tolak tersebut, molekul-molekul itu lebih mungkin saling menempel dan mengendap dari larutan.

Apa perbedaan salting-in dan salting-out? Salting-in berlangsung pada konsentrasi garam rendah, ketika ion terlarut melindungi gugus bermuatan pada protein agar tidak saling berinteraksi dan meningkatkan kelarutan. Salting-out berlangsung pada konsentrasi garam tinggi, ketika ion menghilangkan air dari permukaan protein dan menurunkan kelarutan.

Apakah suhu yang lebih tinggi selalu meningkatkan kelarutan? Tidak. Kelarutan cenderung meningkat seiring kenaikan suhu hanya sampai batas tertentu. Saat suhu mendekati suhu denaturasi protein, protein mulai membuka lipatan, yang biasanya menyebabkan agregasi dan penurunan kelarutan secara tajam.

Mengapa protein lebih sedikit larut dalam etanol atau aseton daripada dalam air? Air memiliki konstanta dielektrik tinggi, yang berarti air sangat efektif melemahkan tarikan listrik antara bagian-bagian bermuatan pada molekul protein. Etanol dan aseton memiliki konstanta dielektrik lebih rendah, sehingga dalam pelarut tersebut gugus bermuatan pada molekul protein yang berbeda saling tarik-menarik lebih kuat dan lebih mudah menyebabkan agregasi.

Seberapa akurat kalkulator ini? Kalkulator ini memberikan perkiraan berdasarkan model fisik serta sejumlah kecil protein dan pelarut acuan. Kalkulator ini berguna untuk mempersempit kondisi yang perlu diuji, tetapi pengukuran eksperimental tetap menjadi satu-satunya cara untuk memastikan kelarutan sampel protein tertentu.

Bacaan lanjutan

  • Arakawa, T., & Timasheff, S. N. (1984). Mekanisme salting in dan salting out protein oleh garam kation divalen. Biochemistry, 23(25), 5912–5923.
  • Trevino, S. R., Scholtz, J. M., & Pace, C. N. (2008). Mengukur dan meningkatkan kelarutan protein. Journal of Pharmaceutical Sciences, 97(10), 4155–4166.
  • Cohn, E. J., & Edsall, J. T. (1943). Proteins, Amino Acids and Peptides as Ions and Dipolar Ions. Reinhold Publishing.