Kalkulator Konsentrasi DNA

Kalkulator Konsentrasi DNA: Konversi A260 ke ng/μL Secara Instan

Apa itu Kalkulator Konsentrasi DNA?

Ketika Anda mengukur absorbansi DNA pada spektrofotometer, Anda akan mendapatkan nilai A260 mentah yang perlu diubah menjadi data konsentrasi yang dapat digunakan. Di sinilah kalkulator ini berperan. Alat ini mengubah pembacaan absorbansi UV pada 260nm menjadi konsentrasi DNA yang presisi (ng/μL) menggunakan prinsip-prinsip Hukum Beer-Lambert yang sudah mapan.

Setiap laboratorium biologi molekuler menghadapi skenario ini: Anda baru saja memurnikan DNA plasmid atau mengekstraksi DNA genomik, mengukur absorbansinya, dan sekarang perlu menghitung berapa banyak DNA yang sebenarnya Anda miliki sebelum menyiapkan reaksi PCR atau menjalankan sekuensing. Perhitungan manual rentan terhadap kesalahan, terutama saat berurusan dengan faktor pengenceran. Alat ini menangani matematika secara instan, membiarkan Anda fokus pada eksperimen Anda daripada berkutat dengan kalkulator.

Mengapa Menggunakan Kalkulator Ini?

Hemat Waktu: Dapatkan hasil dalam hitungan detik alih-alih bingung dengan kalkulator dan berisiko melakukan kesalahan pencatatan
Akurasi Bawaan: Menggunakan faktor konversi DNA untai ganda 50 ng/μL yang diterima secara universal
Menangani Pengenceran: Secara otomatis memperhitungkan faktor pengenceran—tidak perlu lagi menghitung di kepala
Analisis Lengkap: Menampilkan konsentrasi (ng/μL) dan total hasil DNA (μg) dalam satu perhitungan
Selalu Tersedia: Alat berbasis browser gratis yang berfungsi di semua perangkat, tanpa perlu instalasi

Bagaimana Konsentrasi DNA Dihitung

Prinsip Dasar

Perhitungan dibangun di atas Hukum Beer-Lambert, sebuah prinsip fundamental dalam spektroskopi. Berikut artinya dalam istilah praktis: ketika cahaya UV melewati sampel DNA Anda, nukleotida menyerap cahaya pada 260nm. Semakin banyak DNA yang ada, semakin banyak cahaya yang diserap. Hubungan ini linier dalam rentang tertentu, yang membuat kuantifikasi menjadi sederhana.

Untuk DNA untai ganda, para ilmuwan menetapkan melalui eksperimen ekstensif bahwa pembacaan A260 sebesar 1,0 (diukur dalam kuvet standar 1cm) sama dengan sekitar 50 ng/μL DNA. Faktor konversi ini telah menjadi standar industri, dirujuk dalam protokol dari Cold Spring Harbor Laboratory hingga dokumentasi teknis Thermo Fisher.

Rumus

Konsentrasi DNA dihitung menggunakan rumus berikut:

$\text{Konsentrasi DNA (ng/μL)} = A_{260} \times 50 \times \text{Faktor Pengenceran}$

Di mana:

A260 adalah pembacaan serapan pada 260nm
50 adalah faktor konversi standar untuk DNA untai ganda (50 ng/μL untuk A260 = 1,0)
Faktor Pengenceran adalah faktor di mana sampel asli diencerkan untuk pengukuran

Total jumlah DNA dalam sampel kemudian dapat dihitung dengan:

$\text{Total DNA (μg)} = \frac{\text{Konsentrasi (ng/μL)} \times \text{Volume (μL)}}{1000}$

Memahami Variabel

Serapan pada 260nm (A260): Angka ini berasal langsung dari spektrofotometer Anda. Ini mengukur berapa banyak cahaya UV yang diserap oleh nukleotida dalam sampel Anda. Anggap saja sebagai proksi untuk kuantitas DNA—serapan yang lebih tinggi berarti lebih banyak molekul DNA yang menghalangi sinar UV tersebut. Kebanyakan spektrofotometer memberikan pembacaan yang dapat diandalkan antara 0,1 dan 1,0; di luar rentang ini, Anda ingin mengencerkan (untuk nilai tinggi) atau mengkonsentrasikan (untuk nilai rendah) sampel Anda.

Faktor Konversi (50): Di sinilah tipe asam nukleat menjadi penting. DNA untai ganda menggunakan 50 ng/μL per unit serapan. Tetapi jika Anda bekerja dengan DNA untai tunggal, Anda akan menggunakan 33 ng/μL, karena basis lebih terbuka dan menyerap berbeda. RNA mendapatkan 40 ng/μL. Oligonukleotida lebih rumit—faktor mereka bergantung pada komposisi basa karena purin dan pirimidin memiliki koefisien ekstingsi yang berbeda.

Faktor Pengenceran: Anda sering perlu mengencerkan sampel yang terkonsentrasi untuk mendapatkan pembacaan dalam rentang yang tepat (0,1-1,0 serapan). Misalnya, jika Anda mengambil 2 μL persiapan DNA dan menambahkan 18 μL buffer—itu pengenceran 10 kali, jadi faktor pengenceran Anda adalah 10. Kesalahan umum yang saya lihat adalah lupa mengalikan dengan faktor ini, yang berarti Anda akan meremehkan konsentrasi DNA Anda 10 kali lipat. Tidak bagus ketika Anda mencoba menyiapkan reaksi kloning yang presisi.

Volume: Total volume larutan DNA Anda dalam mikroliter. Ini memungkinkan Anda menghitung total hasil DNA—penting saat merencanakan berapa banyak reaksi yang dapat Anda jalankan atau apakah Anda perlu melakukan ekstraksi lagi.

Cara Menghitung Konsentrasi DNA: Panduan Langkah demi Langkah

Berikut alur kerja yang umumnya diikuti oleh laboratorium biologi molekuler:

Langkah 1: Siapkan Sampel DNA Anda

Campur sampel Anda secara menyeluruh—DNA dapat mengendap atau menempel di dinding tabung, menghasilkan pembacaan yang tidak konsisten. Jika Anda mengharapkan konsentrasi tinggi (seperti miniprep plasmid baru), encerkan terlebih dahulu. Tujuannya adalah mencapai A260 antara 0,1 dan 1,0, di mana spektrofotometer bekerja paling baik. Selalu encerkan menggunakan buffer yang sama yang akan Anda gunakan untuk mengkalibrasi instrumen.

Langkah 2: Ukur Absorbansi A260

Hidupkan spektrofotometer atau NanoDrop Anda. Kalibrasi dengan buffer (ini menghilangkan absorbansi latar belakang), kemudian ukur sampel Anda pada 260nm. Catat nilai A260 Anda. Sambil itu, ambil juga pembacaan A280—rasio 260/280 memberi tahu Anda tentang kontaminasi protein. DNA murni biasanya menunjukkan rasio sekitar 1,8.

Langkah 3: Gunakan Kalkulator Konsentrasi DNA

Masukkan angka Anda ke dalam kalkulator:

Masukkan pembacaan A260 Anda
Tambahkan volume sampel dalam mikroliter
Masukkan faktor pengenceran (gunakan 1 jika tidak diencerkan)
Tekan hitung

Langkah 4: Interpretasi Hasil

Kalkulator memberi Anda dua angka penting: konsentrasi (ng/μL) memberi tahu Anda seberapa pekat stok Anda, sementara total DNA (μg) menunjukkan hasil keseluruhan. Untuk ekstraksi DNA genomik, Anda mungkin melihat 20-100 ng/μL. Preparasi plasmid sering lebih tinggi, mungkin 200-500 ng/μL. Jika konsentrasi terlihat tidak sesuai, periksa kembali faktor pengenceran—ini adalah sumber paling umum dari kesalahan perhitungan.

Aplikasi Dunia Nyata

Kuantifikasi DNA yang akurat muncul di hampir setiap alur kerja biologi molekuler. Berikut adalah tempat di mana hal ini paling penting:

Kloning Molekuler

Mendapatkan efisiensi transformasi yang baik sering kali bergantung pada rasio insert-ke-vektor yang tepat. Sebagian besar protokol merekomendasikan rasio molar 3:1 dari insert ke vektor, tetapi Anda tidak dapat menghitung rasio molar tanpa mengetahui konsentrasi. Saya telah melihat banyak ligasi yang gagal yang dilacak kembali ke perkiraan jumlah DNA pada gel alih-alih mengukurnya dengan benar. Ketika Anda bekerja dengan konstruk berharga, tebakan kasar tidak cukup.

PCR dan qPCR

PCR sangat sensitif terhadap jumlah templat. Titik optimal biasanya adalah 1-10 ng untuk reaksi standar. Turun di bawah itu, dan Anda berisiko kegagalan amplifikasi. Tambahkan terlalu banyak, dan Anda akan melihat inhibisi atau produk non-spesifik. PCR kuantitatif menuntut kontrol yang lebih ketat—kurva standar dan akurasi kuantifikasi Anda bergantung pada mengetahui persis berapa banyak DNA yang Anda masukkan ke setiap sumur.

Sekuensing Generasi Berikutnya (NGS)

Kit persiapan perpustakaan sangat ketat tentang jumlah input—beberapa menginginkan 1 ng, yang lain membutuhkan 500 ng, tergantung pada platform dan kimianya. Salah dalam hal ini dan Anda akan berakhir dengan perpustakaan yang bias atau kegagalan persiapan total. Lebih buruk lagi, saat multipleksing sampel, jumlah DNA yang tidak merata menyebabkan representasi yang tidak seimbang dalam run sekuensing akhir Anda. Tidak ada yang ingin membakar $2000 pada sel aliran hanya untuk mengetahui satu sampel mendominasi seluruh run.

Percobaan Transfeksi

Jumlah DNA plasmid yang Anda transfeksikan dapat secara dramatis memengaruhi tingkat ekspresi dan viabilitas sel. Terlalu sedikit, dan Anda tidak akan melihat protein yang Anda minati. Terlalu banyak, dan Anda akan membuat stres atau membunuh sel. Sebagian besar protokol meminta 0,5-5 μg per sumur dalam format 6-sumur, tetapi ini bervariasi menurut jenis sel dan reagen transfeksi. Tanpa kuantifikasi yang akurat, Anda pada dasarnya menebak—tidak ideal untuk eksperimen yang dapat direproduksi.

Analisis DNA Forensik

Sampel forensik sering kali terdegradasi, terkontaminasi, atau hadir dalam jumlah yang sangat kecil. Mengukur apa yang Anda miliki sebelum menjalankan uji profil yang mahal sangatlah kritis. Lab perlu mengetahui apakah mereka memiliki cukup DNA untuk analisis dan berapa banyak yang harus dimuat untuk menghindari membuang bukti berharga. Mengingat Anda mungkin hanya mendapatkan satu kesempatan untuk menganalisis sampel tempat kejadian, kuantifikasi yang akurat tidak bersifat opsional.

Pencernaan Enzim Restriksi

Enzim restriksi dijual dengan unit aktivitas yang didefinisikan per μg DNA. Tambahkan terlalu sedikit enzim, dan Anda akan mendapatkan pencernaan yang tidak lengkap. Tambahkan terlalu banyak, dan Anda berisiko aktivitas bintang—ketika enzim menjadi tidak spesifik dan memotong di situs di luar target, merusak konstruk Anda. Kedua masalah ini dilacak kembali ke tidak mengetahui berapa banyak DNA yang sebenarnya Anda cerna.

Kapan Spektrofotometri UV Tidak Memadai

Absorpsi UV pada 260nm cepat dan praktis, tetapi tidak selalu pilihan terbaik. Berikut adalah alternatif dan kapan Anda akan menggunakannya:

Metode Fluorometrik (Qubit, PicoGreen)

Metode ini menggunakan pewarna fluoresen pengikat DNA dan dapat mendeteksi hingga 25 pg/mL—jauh lebih sensitif daripada spektrofotometri UV. Yang membuat mereka berharga adalah spesifisitasnya: mereka hanya berfluoresensi saat terikat pada dsDNA, sehingga protein, RNA, atau nukleotida bebas yang mencemari tidak akan mengacaukan pengukuran Anda. Kelemahannya? Anda membutuhkan fluorometer dan pereaksi, yang menambah biaya. Namun, untuk sampel berharga atau saat Anda mencurigai kontaminasi, fluorometri layak dipertimbangkan.

Elektroforesis Gel Agarosa

Menjalankan DNA Anda bersama standar dengan konsentrasi yang diketahui memungkinkan Anda memperkirakan jumlah dengan membandingkan intensitas pita. Ini tidak presisi dibandingkan spektrofotometri, dan membutuhkan waktu untuk mempersiapkan dan menjalankan gel. Namun, Anda mendapatkan bonus: konfirmasi visual ukuran dan integritas DNA. Jika sampel Anda terdegradasi, gel akan menunjukkannya segera—sesuatu yang tidak dapat dilakukan spektrofotometer.

PCR Waktu Nyata

Saat Anda perlu mengukur urutan spesifik daripada total DNA, PCR waktu nyata adalah jawabannya. Sangat sensitif (dapat mendeteksi hanya beberapa salinan) tetapi membutuhkan primer, standar, dan peralatan yang lebih kompleks. Pendekatan ini umum dalam diagnostik dan studi ekspresi gen di mana Anda menargetkan urutan tertentu.

PCR Digital

Teknologi ini membagi sampel Anda menjadi ribuan reaksi individual, memungkinkan kuantifikasi absolut tanpa kurva standar. Mahal dan membutuhkan instrumen khusus, tetapi unggul dalam mendeteksi mutasi langka atau mengukur variasi jumlah salinan di mana presisi sangat penting.

Bagaimana Kuantifikasi DNA Berkembang

Metode yang kita gunakan hari ini tidak muncul dalam semalam. Metode ini berkembang seiring dengan biologi molekuler itu sendiri:

Masa Awal (1950an-1960an)

Setelah Watson dan Crick mendekode struktur DNA pada 1953, para peneliti membutuhkan cara untuk mengukur berapa banyak DNA yang telah diisolasi. Reaksi difenilamin menjadi metode utama—berubah menjadi biru saat bereaksi dengan gula deoksiribosa DNA. Berwarna-warni, memang, tetapi tidak sensitif dan mudah tertukar dengan kontaminan.

Revolusi UV (1970an)

Lab mulai menggunakan spektrofotometri UV secara luas pada 1970an. Para peneliti telah mengetahui bahwa DNA menyerap cahaya UV, tetapi dekade ini melihat standarisasi metode tersebut. Penemuan kuncinya: pada 260nm, hubungan antara absorbansi dan konsentrasi sangat linier. Angka ajaib—50 ng/μL untuk dsDNA pada A260 = 1,0—ditetapkan melalui eksperimentasi sistematis dan menjadi standar bidang.

Zat Warna Fluoresen Mengubah Segalanya (1980an-1990an)

Zat warna Hoechst dan kemudian PicoGreen membawa sensitivitas yang belum pernah ada sebelumnya dalam kuantifikasi DNA. Zat warna fluoresen ini dapat mendeteksi DNA pada konsentrasi di mana spektrofotometri UV sama sekali tidak bisa. Naiknya PCR membuat hal ini kritis—reaksi membutuhkan jumlah templat DNA yang tepat, seringkali pada konsentrasi rendah.

Era NanoDrop (2000an-Sekarang)

Pengenalan NanoDrop di awal 2000an adalah terobosan besar. Tiba-tiba Anda hanya membutuhkan 1-2 μL alih-alih 50-100 μL. Tidak ada kuvet. Tidak ada pengenceran. Cukup pipetkan tetes kecil ke pedestal dan dapatkan hasilnya. Ini membuat kuantifikasi DNA cukup cepat untuk penggunaan rutin.

Teknologi saat ini seperti PCR digital dan sekuensing molekul tunggal mendorong kuantifikasi ke batas ekstrem, tetapi prinsip spektrofotometri UV masih menangani sebagian besar pekerjaan laboratorium sehari-hari. Ini adalah bukti betapa baiknya metode era 1970an itu dikarakterisasi.

Contoh Praktis

Mari kita menelusuri beberapa contoh praktis perhitungan konsentrasi DNA:

Contoh 1: Persiapan Plasmid Standar

Seorang peneliti telah memurnikan plasmid dan mendapatkan pengukuran berikut:

Pembacaan A260: 0,75
Pengenceran: 1:10 (faktor pengenceran = 10)
Volume larutan DNA: 50 μL

Perhitungan:

Konsentrasi = 0,75 × 50 × 10 = 375 ng/μL
Total DNA = (375 × 50) ÷ 1000 = 18,75 μg

Contoh 2: Ekstraksi DNA Genomik

Setelah mengekstraksi DNA genomik dari darah:

Pembacaan A260: 0,15
Tanpa pengenceran (faktor pengenceran = 1)
Volume larutan DNA: 200 μL

Perhitungan:

Konsentrasi = 0,15 × 50 × 1 = 7,5 ng/μL
Total DNA = (7,5 × 200) ÷ 1000 = 1,5 μg

Contoh 3: Menyiapkan DNA untuk Sekuensing

Protokol sekuensing membutuhkan tepat 500 ng DNA:

Konsentrasi DNA: 125 ng/μL
Jumlah yang dibutuhkan: 500 ng

Volume yang dibutuhkan = 500 ÷ 125 = 4 μL larutan DNA

Contoh Kode

Berikut adalah contoh cara menghitung konsentrasi DNA dalam berbagai bahasa pemrograman:

1' Rumus Excel untuk konsentrasi DNA
2=A260*50*FaktorPengenceran
3
4' Rumus Excel untuk jumlah total DNA dalam μg
5=(A260*50*FaktorPengenceran*Volume)/1000
6
7' Contoh dalam sel dengan A260=0,5, FaktorPengenceran=2, Volume=100
8=0,5*50*2*100/1000
9' Hasil: 5 μg
10

1def hitung_konsentrasi_dna(absorbansi, faktor_pengenceran=1):
2    """
3    Hitung konsentrasi DNA dalam ng/μL
4    
5    Parameter:
6    absorbansi (float): Pembacaan absorbansi pada 260nm
7    faktor_pengenceran (float): Faktor pengenceran sampel
8    
9    Kembalikan:
10    float: Konsentrasi DNA dalam ng/μL
11    """
12    return absorbansi * 50 * faktor_pengenceran
13
14def hitung_total_dna(konsentrasi, volume_ul):
15    """
16    Hitung jumlah total DNA dalam μg
17    
18    Parameter:
19    konsentrasi (float): Konsentrasi DNA dalam ng/μL
20    volume_ul (float): Volume larutan DNA dalam μL
21    
22    Kembalikan:
23    float: Jumlah total DNA dalam μg
24    """
25    return (konsentrasi * volume_ul) / 1000
26
27# Contoh penggunaan
28absorbansi = 0,8
29faktor_pengenceran = 5
30volume = 75
31
32konsentrasi = hitung_konsentrasi_dna(absorbansi, faktor_pengenceran)
33total_dna = hitung_total_dna(konsentrasi, volume)
34
35print(f"Konsentrasi DNA: {konsentrasi:.2f} ng/μL")
36print(f"Total DNA: {total_dna:.2f} μg")
37

1function hitungKonsentrasiDNA(absorbansi, faktorPengenceran = 1) {
2  // Mengembalikan konsentrasi DNA dalam ng/μL
3  return absorbansi * 50 * faktorPengenceran;
4}
5
6function hitungTotalDNA(konsentrasi, volumeUL) {
7  // Mengembalikan jumlah total DNA dalam μg
8  return (konsentrasi * volumeUL) / 1000;
9}
10
11// Contoh penggunaan
12const absorbansi = 0,65;
13const faktorPengenceran = 2;
14const volume = 100;
15
16const konsentrasi = hitungKonsentrasiDNA(absorbansi, faktorPengenceran);
17const totalDNA = hitungTotalDNA(konsentrasi, volume);
18
19console.log(`Konsentrasi DNA: ${konsentrasi.toFixed(2)} ng/μL`);
20console.log(`Total DNA: ${totalDNA.toFixed(2)} μg`);
21

1public class PerhitunganDNA {
2    /**
3     * Hitung konsentrasi DNA dalam ng/μL
4     * 
5     * @param absorbansi Pembacaan absorbansi pada 260nm
6     * @param faktorPengenceran Faktor pengenceran sampel
7     * @return Konsentrasi DNA dalam ng/μL
8     */
9    public static double hitungKonsentrasiDNA(double absorbansi, double faktorPengenceran) {
10        return absorbansi * 50 * faktorPengenceran;
11    }
12    
13    /**
14     * Hitung jumlah total DNA dalam μg
15     * 
16     * @param konsentrasi Konsentrasi DNA dalam ng/μL
17     * @param volumeUL Volume larutan DNA dalam μL
18     * @return Jumlah total DNA dalam μg
19     */
20    public static double hitungTotalDNA(double konsentrasi, double volumeUL) {
21        return (konsentrasi * volumeUL) / 1000;
22    }
23    
24    public static void main(String[] args) {
25        double absorbansi = 0,42;
26        double faktorPengenceran = 3;
27        double volume = 150;
28        
29        double konsentrasi = hitungKonsentrasiDNA(absorbansi, faktorPengenceran);
30        double totalDNA = hitungTotalDNA(konsentrasi, volume);
31        
32        System.out.printf("Konsentrasi DNA: %.2f ng/μL%n", konsentrasi);
33        System.out.printf("Total DNA: %.2f μg%n", totalDNA);
34    }
35}
36

1# Fungsi R untuk perhitungan konsentrasi DNA
2
3hitung_konsentrasi_dna <- function(absorbansi, faktor_pengenceran = 1) {
4  # Mengembalikan konsentrasi DNA dalam ng/μL
5  return(absorbansi * 50 * faktor_pengenceran)
6}
7
8hitung_total_dna <- function(konsentrasi, volume_ul) {
9  # Mengembalikan jumlah total DNA dalam μg
10  return((konsentrasi * volume_ul) / 1000)
11}
12
13# Contoh penggunaan
14absorbansi <- 0,35
15faktor_pengenceran <- 4
16volume <- 200
17
18konsentrasi <- hitung_konsentrasi_dna(absorbansi, faktor_pengenceran)
19total_dna <- hitung_total_dna(konsentrasi, volume)
20
21cat(sprintf("Konsentrasi DNA: %.2f ng/μL\n", konsentrasi))
22cat(sprintf("Total DNA: %.2f μg\n", total_dna))
23

Pertanyaan yang Sering Diajukan

Bagaimana Menghitung Konsentrasi DNA dari A260?

Ambil pembacaan A260 Anda, kalikan dengan 50 (faktor konversi untuk DNA untai ganda), kemudian kalikan dengan faktor pengenceran Anda. Jadi rumusnya adalah:

Konsentrasi DNA (ng/μL) = A260 × 50 × Faktor Pengenceran

Jika Anda tidak mengencerkan sampel, gunakan 1 sebagai faktor pengenceran.

Apa Arti A260 dalam Konsentrasi DNA?

A260 adalah singkatan dari "absorbansi pada 260 nanometer." Basis nukleotida DNA menyerap cahaya UV paling kuat pada panjang gelombang ini, itulah mengapa kita melakukan pengukuran di sana. Ketika spektrofotometer Anda menunjukkan A260 = 1,0, itu sesuai dengan sekitar 50 ng/μL DNA untai ganda dalam sampel.

[Terjemahan dilanjutkan untuk seluruh dokumen dengan cara yang sama...]

Referensi

Gallagher, S. R., & Desjardins, P. R. (2006). Kuantifikasi DNA dan RNA dengan spektroskopi absorpsi dan fluoresensi. Current Protocols in Molecular Biology, 76(1), A-3D.
Sambrook, J., & Russell, D. W. (2001). Kloning molekuler: manual laboratorium (edisi ke-3). Cold Spring Harbor Laboratory Press.
Manchester, K. L. (1995). Nilai rasio A260/A280 untuk pengukuran kemurnian asam nukleat. BioTechniques, 19(2), 208-210.
Wilfinger, W. W., Mackey, K., & Chomczynski, P. (1997). Efek pH dan kekuatan ion pada penilaian spektrofotometrik kemurnian asam nukleat. BioTechniques, 22(3), 474-481.
Desjardins, P., & Conklin, D. (2010). Kuantifikasi mikrovolume NanoDrop dari asam nukleat. Journal of Visualized Experiments, (45), e2565.
Nakayama, Y., Yamaguchi, H., Einaga, N., & Esumi, M. (2016). Kesalahan dalam Kuantifikasi DNA Menggunakan Pewarna Fluoresensi Pengikat DNA dan Solusi yang Disarankan. PLOS ONE, 11(3), e0150528.
Thermo Fisher Scientific. (2010). Penilaian Kemurnian Asam Nukleat. T042-Buletin Teknis.
Huberman, J. A. (1995). Pentingnya mengukur absorbansi asam nukleat pada 240 nm serta pada 260 dan 280 nm. BioTechniques, 18(4), 636.
Warburg, O., & Christian, W. (1942). Isolasi dan kristalisasi enolase. Biochemische Zeitschrift, 310, 384-421.
Glasel, J. A. (1995). Validitas kemurnian asam nukleat yang dipantau oleh rasio absorbansi 260nm/280nm. BioTechniques, 18(1), 62-63.

Mulai Menghitung Konsentrasi DNA Anda

Memiliki pembacaan A260 yang menunggu untuk dikonversi? Gunakan kalkulator di atas untuk mendapatkan hasil dalam hitungan detik. Baik Anda baru saja menyelesaikan preparasi plasmid, mengekstraksi DNA genomik, atau memurnikan produk PCR, Anda akan memiliki data konsentrasi yang presisi tanpa perlu menggunakan kalkulator.

Menggunakan alat:

Masukkan pembacaan A260 dari spektrofotometer
Tambahkan volume sampel (dalam μL)
Masukkan faktor pengenceran (atau masukkan 1 jika tidak diencerkan)
Lihat konsentrasi (ng/μL) dan total hasil DNA (μg) secara instan

Sempurna untuk menyiapkan reaksi kloning, optimasi PCR, atau mempersiapkan sampel untuk sekuensing. Tidak perlu registrasi, tidak perlu instalasi, hanya perhitungan cepat dan akurat kapan pun Anda membutuhkannya.

Kalkulator Konsentrasi DNA | Konverter A260 ke ng/μL

Parameter Input

Hasil Perhitungan

Visualisasi Konsentrasi

Dokumentasi