Arvutage seeria lahjenduse kontsentratsioonid mikrobioloogias, PCR-is ja ravimite testimisel. Tasuta tööriist näitab iga sammu koheselt. Ideaalne bakterite loendamiseks, ELISA analüüsideks ja labori protokollideks.
* Kohustuslikud väljad
Seeriline lahjendamine on laboratoorne tehnika, kus te järk-järgult vähendatate aine kontsentratsiooni, lahjendades seda etappide kaupa. Iga lahjendus kasutab eelmist lahjendust lähtepunktina, luues ennustatava kontsentratsiooni seeria. See kalkulaator aitab teil määrata täpset kontsentratsiooni igal astmel ilma käsitsi arvutamise vigadeta.
Praktikas lahendab seeriline lahjendamine levinud laboratoorset probleemi: kui teil on väga kontsentreeritud proov ja vajate palju madalamat kontsentratsiooni. Selle asemel, et püüda mõõta väga väikesi koguseid otse (mis toob kaasa märkimisväärse vea), lahjendatakse proovi etappide kaupa. Iga samm on käsitletav ja mõõdetav, muutes kogu protsessi usaldusväärsemaks. Seda tehnikat kasutatakse igapäevaselt mikrobioloogia laborites bakterite loendamiseks, biokeemias valkude analüüsimiseks ja farmakoloogias ravimite testimiseks.
Siin on põhimõte: alustate teadaoleva kontsentratsiooniga (C₁) ja lahjendage seda kindla teguriga (DF), et saada uus, madalam kontsentratsioon (C₂). Seejärel võtate selle lahjendatud lahuse ja lahjendate seda uuesti sama teguriga. Korrake nii mitu korda, kui vaja.
Matemaatika on lihtne:
Kus:
Mitme lahjendussammu jaoks saate otse minna mis tahes sammule:
Kus:
Lahjenduse tegur näitab, kui palju iga lahus lahjemaks muutub. Minu kogemuse järgi on kõige sagedamini kasutatavad tegurid:
Lahjenduse tegur 10 (1:10): Iga samm on eelmisest kontsentratsioonist kümnendik. See on mikroobide laboratooriumide töövahend, kuna loob logaritmilise skaala, mida on lihtne kasutada ja mis katab kiiresti laia kontsentratsioonivahemiku.
Lahjenduse tegur 2 (1:2): Iga samm on eelmisest pooleks. Seda näete farmakoloogias ja toksikoloogias, kus vajate kontsentratsioonigradientide jaoks täpsemat eraldusvõimet.
Lahjenduse tegur 5 (1:5): Keskmine variant, mis on kasulik, kui soovite rohkem andmepunkte kui 1:10 seerias, kuid ei vaja 1:2 eraldusvõimet.
Inimesed kipuvad sassi ajama lahjendussuhte (1:10) mahutega. 1:10 lahjendus tähendab 1 osa proovi pluss 9 osa lahjentit võrdub 10 osa kokku - mitte 1 osa proovi 10 osa lahjendile.
Kalkulaatori kasutamine on lihtne:
Kalkulaator näitab teile tabelit kontsentratsiooniga igas sammus. See on eriti kasulik, kui planeerite katseid ja vajate teada, kas teie lõppkontsentratsioon on õiges vahemikus, või kui koostate protokolle laboriliikmete jaoks, kes vajavad selgeid juhiseid.
Siin on standardne lähenemine, mida kasutatakse enamikes laborites:
Valmistage ette oma materjalid:
Märgistage kõik enne alustamist. Usaldage mind—protsessi keskel on lihtne jälg kaotada. Tavaliselt kirjutan iga katsutile lahjendussuhte ja sammu numbri.
Eelnevalt lisage lahjendi kõikidesse katsutitesse (välja arvatud esimene katsuti, kus on algne proov):
Tehke oma esimene lahjendus:
Jätkake seeriaga:
Kasutage kohe või säilitage õigesti. Lahjendatud proovid võivad aja jooksul muutuda settimise, rakkude kasvu (kui elujõulised) või lagunemise tõttu.
Pärast aastaid laboratoorset tööd ja üliõpilaste õpetamist siin on vead, mida ma kõige sagedamini näen:
Segamise probleemid: See on vea #1 allikas. Bakterid settivad, valgud agregeeruvad ja osakesed ei püsi ühtlaselt suspensioonis. Segage põhjalikult igal sammul—tavaliselt teen 3-5 sekundit vorteksil. Proovide puhul, mis vahutavad (nagu valgulahused), sobib õrn segamine paremini kui vorteksimine.
Pipetiotsikute korduvkasutamine: Isegi väike kogus ülekanne kontsentreeritud katsutist võib teie lahjendusi märkimisväärselt moonutada. Uued otsikud igal korral, mingeid erandeid ei ole.
Mahuvigad: Pipetid on täpsed teatud vahemikus. P1000 pipett on täpne 200-1000 μL vahel, mitte 50 μL juures. Kasutage õiget suurust vastavalt oma mahule.
Liiga aeglane töötamine teatavate proovidega: Elavad bakterid jätkavad kasvu, ensüümid jätkavad tööd ja mõned ühendid lagunevad. Viige oma lahjendussari võimalusel 10-15 minutiga lõpule ja hoidke proove jääl, kui need on temperatuuritundlikud.
Lahjendussuhte ja -faktori segamine: Kui teie protokoll ütleb "1:10 lahjendus", tähendab see lõplikku suhet, mitte 10 mL lisamist. See on 1 osa proovi + 9 osa lahjentit = 10 osa kokku.
Järjestikused lahjendused esinevad peaaegu kõigis laboratoorsetes teadusvaldkondades:
Bakterite kolooniate loendamine on tõenäoliselt kõige levinum kasutusviis. Kui teil on vedelkultuur, mis võib sisaldada miljoneid või miljardeid baktereid milliliitri kohta, ei saa neid otse loendada. Järjestikused lahjendused võimaldavad teil külvata loendatava arvu kolooniad (tavaliselt 30-300) agarplaadile ja seejärel tagasiarvutada algne kontsentratsioon.
MIK testimine (minimaalne inhibeeriv kontsentratsioon) kasutab järjestikusi lahjendusi, et leida madalaim antibiootikumi kontsentratsioon, mis peatab bakterite kasvu. See aitab kindlaks teha, millised antibiootikumid toimivad teatud infektsiooni puhul ja millises annuses.
Viiruste tiitrimine järgib sama loogikat kui bakterite loendamine, kuid mõõdab viiruseosakesi või nakkusüksusi.
Valgu kvantifitseerimine nõuab tavaliselt standardkõverat. Te teete järjestikused lahjendused valgu standardist (nagu BSA), mõõdate neelduvust või fluorestsentsi, konstrueerite kõvera ja kasutate seda tundmatute kontsentratsioonide määramiseks.
PCR malli ettevalmistamine vajab hoolikat lahjendamist, kuna PCR on tundlik DNA kontsentratsiooni suhtes. Liiga palju malli põhjustab mittespetsiifilise amplifikatsiooni; liiga vähe annab nõrku signaale. Järjestikused lahjendused aitavad leida optimaalse vahemiku, tavaliselt 1 ng kuni 100 ng DNA reaktsiooni kohta.
Doos-toime kõverad moodustavad farmakoloogia aluse. Te eksponeerite rakke või organisme ravimi järjestikustele lahjendistele, et mõista doosi ja toime vahelist seost. See paljastab raviakna - vahemiku, kus ravim toimib ilma toksilisust põhjustamata.
IC50 määramine (kontsentratsioon, mis inhibeerib 50% aktiivsusest) põhineb mitme kontsentratsiooni testimisel, mida tavaliselt luuakse järjestikuste lahjenduste kaudu.
ELISA analüüsid vajavad standardkõveraid sarnaselt valguanalüüsidele. Tavaliselt kasutatakse 1:2 või 1:3 järjestikusi lahjendusi teadaoleva standardi puhul kalibreerimiskõvera loomiseks.
Antikeha tiitrimine määrab kindlaks, kui palju antikehi on proovis (näiteks patsiendi seerumis). Tiiter väljendatakse sageli kõrgeima lahjendusena, mis veel näitab positiivset tulemust.
Standardsari kasutab igal sammul sama vedeldamisfaktorit. Seda kasutatakse 95% juhtudest - see on lihtne, reprodutseeritav ja kergesti arvutatav.
Kahekordne (topelt) vedeldamine on spetsiifiline tüüp, kus kontsentratsiooni poolatatakse igal sammul (1:2 vedeldamisfaktor). Farmakoloogid armastavad seda annuse-vastuse uuringutes, kuna see annab hea tasakaalu resolutsiooni ja vahemiku vahel.
Kümnekordne (detsimaal) vedeldamine kasutab 1:10 faktorit, luues logaritmilise skaala. Mikrobioloogid kasutavad seda vaikimisi bakterite loendamiseks, kuna see kiiresti katab mitu suurusjärku.
Kohandatud sari erineva vedeldamisfaktoriga erinevatel sammudel eksisteerib, kuid on vähem levinud. Need on kasulikud, kui vajate ühes kontsentratsioonivahemikus head resolutsiooni ja teises laiemaid samme. Siiski suurendavad need keerukust ja veavõimalust, mistõttu enamik laboratooriume hoiab kinni konstantsetest faktoritest.
Stsenaarium: Teil on üleöö E. coli kultuur, mille hinnanguline kontsentratsioon on umbes 10⁸ CFU/mL vastavalt hägususele. Soovite rakke plaadistada täpse loenduse saamiseks, kuid lahjendamata kultuuri plaatimine annaks bakterite "murust", mida pole võimalik loendada. Teil on vaja 30-300 kolooniat plaadi kohta täpseks loenduseks.
Lahendus: Looge 1:10 seeriline lahjenduste rida 6 sammuga.
Tulemused:
Kui plaadite 100 μL 10⁴ sammust, saate umbes 10³ rakku plaadil (100 μL = 0,1 mL, seega 10⁴ × 0,1 = 10³). See on täpselt loendatava vahemiku sees.
Stsenaarium: Testite uut ravimikandidaati vähirakkudel. Prognoositav IC50 (kontsentratsioon, mis tapab 50% rakkudest) on umbes 25 mg/mL, kuid te ei tea täpset väärtust. Soovite testida erinevaid kontsentratsioone doosi-vastuse kõvera genereerimiseks.
Lahendus: Alustage 100 mg/mL-st ja looge 1:2 seeriline lahjenduste rida 5 sammuga.
Tulemused:
See seeria katab tõenäolise IC50 vahemiku hea lahutusega. Kahekordsed lahjendused annavad piisavalt andmepunkte sujuva kõvera genereerimiseks ilma liigse testimiseta.
1def calculate_serial_dilution(initial_concentration, dilution_factor, num_dilutions):
2 """
3 Arvuta kontsentratsioonid seeria lahjenduse sarjas
4
5 Parameetrid:
6 initial_concentration (float): Algne kontsentratsioon
7 dilution_factor (float): Tegur, millega iga lahjendus kontsentratsiooni vähendab
8 num_dilutions (int): Arvutatavate lahjendussammude arv
9
10 Tagastab:
11 list: List sõnastitest, mis sisaldavad sammu numbrit ja kontsentratsiooni
12 """
13 if initial_concentration <= 0 or dilution_factor <= 1 or num_dilutions < 1:
14 return []
15
16 dilution_series = []
17 current_concentration = initial_concentration
18
19 # Lisa algne kontsentratsioon sammuna 0
20 dilution_series.append({
21 "step_number": 0,
22 "concentration": current_concentration
23 })
24
25 # Arvuta iga lahjendussamm
26 for i in range(1, num_dilutions + 1):
27 current_concentration = current_concentration / dilution_factor
28 dilution_series.append({
29 "step_number": i,
30 "concentration": current_concentration
31 })
32
33 return dilution_series
34
35# Kasutamise näide
36initial_conc = 100
37dilution_factor = 2
38num_dilutions = 5
39
40results = calculate_serial_dilution(initial_conc, dilution_factor, num_dilutions)
41for step in results:
42 print(f"Samm {step['step_number']}: {step['concentration']:.4f}")
431function calculateSerialDilution(initialConcentration, dilutionFactor, numDilutions) {
2 // Sisendite kontrollimine
3 if (initialConcentration <= 0 || dilutionFactor <= 1 || numDilutions < 1) {
4 return [];
5 }
6
7 const dilutionSeries = [];
8 let currentConcentration = initialConcentration;
9
10 // Lisa algne kontsentratsioon sammuna 0
11 dilutionSeries.push({
12 stepNumber: 0,
13 concentration: currentConcentration
14 });
15
16 // Arvuta iga lahjendussamm
17 for (let i = 1; i <= numDilutions; i++) {
18 currentConcentration = currentConcentration / dilutionFactor;
19 dilutionSeries.push({
20 stepNumber: i,
21 concentration: currentConcentration
22 });
23 }
24
25 return dilutionSeries;
26}
27
28// Kasutamise näide
29const initialConc = 100;
30const dilutionFactor = 2;
31const numDilutions = 5;
32
33const results = calculateSerialDilution(initialConc, dilutionFactor, numDilutions);
34results.forEach(step => {
35 console.log(`Samm ${step.stepNumber}: ${step.concentration.toFixed(4)}`);
36});
371Excelis saate seeria lahjenduse sarja arvutada järgmisel viisil:
2
31. Lahtrisse A1 sisestage "Samm"
42. Lahtrisse B1 sisestage "Kontsentratsioon"
53. Lahtritesse A2 kuni A7 sisestage sammunumbrid 0 kuni 5
64. Lahtrisse B2 sisestage oma algne kontsentratsioon (nt 100)
75. Lahtrisse B3 sisestage valem =B2/lahjenduse_tegur (nt =B2/2)
86. Kopeerige valem alla lahtrisse B7
9
10Alternatiivne valem lahtrisse B3, mida saab alla kopeerida:
11=algne_kontsentratsioon/(lahjenduse_tegur^A3)
12
13Näiteks, kui algne kontsentratsioon on 100 ja lahjenduse tegur on 2:
14=100/(2^A3)
151calculate_serial_dilution <- function(initial_concentration, dilution_factor, num_dilutions) {
2 # Sisendite kontrollimine
3 if (initial_concentration <= 0 || dilution_factor <= 1 || num_dilutions < 1) {
4 return(data.frame())
5 }
6
7 # Looge vektorid tulemuste salvestamiseks
8 step_numbers <- 0:num_dilutions
9 concentrations <- numeric(length(step_numbers))
10
11 # Arvuta kontsentratsioonid
12 for (i in 1:length(step_numbers)) {
13 step <- step_numbers[i]
14 concentrations[i] <- initial_concentration / (dilution_factor^step)
15 }
16
17 # Tagasta andmeraamina
18 return(data.frame(
19 step_number = step_numbers,
20 concentration = concentrations
21 ))
22}
23
24# Kasutamise näide
25initial_conc <- 100
26dilution_factor <- 2
27num_dilutions <- 5
28
29results <- calculate_serial_dilution(initial_conc, dilution_factor, num_dilutions)
30print(results)
31
32# Valikuline: loo joonis
33library(ggplot2)
34ggplot(results, aes(x = step_number, y = concentration)) +
35 geom_bar(stat = "identity", fill = "steelblue") +
36 labs(title = "Seeria lahjenduse sari",
37 x = "Lahjendussamm",
38 y = "Kontsentratsioon") +
39 theme_minimal()
40Seerialine lahjendamine on standardne meetod enamikus laborites, kuid see pole alati optimaalne. Siin on juhud, millal võite soovida midagi muud:
Tehke iga lahjendus otse algstoksist, mitte eelmisest lahjendusest. See kõrvaldab kuhjuva vea - kui te teete ühe lahjenduse valesti, ei mõjuta see teisi.
Millal kasutada: Kõrge täpsusega töös nagu farmaatsiastandardid või kui loote mitu sõltumatut standardit. Kompromiss on see, et kasutate rohkem algstokki ja peate hoolikalt pipeteerima erinevaid mahte (raskem kui sama mahu korduvalt ülekandmine).
Olen näinud, kuidas paralleelne lahjendamine on päästnud katseid, kui kellelgi tekkis kahtlus pipeteerimisveast seerialises lahjendusseerias. Selle asemel, et kõike uuesti teha, läksime kriitiliste standardite puhul üle paralleelsele lahjendamisele.
Kui vajate ainult ühte kindlat kontsentratsiooni, tehke see otse, mitte luues tervet seeriat. Näiteks kui vajate 1 mg/mL kontsentratsiooni 100 mg/mL stoksist, lahjendage lihtsalt 1:100 otse. Ärge looge seerialist lahjendusseeriat, kui te tegelikult ei vaja mitut kontsentratsiooni.
Mõõtke kaalu järgi, mitte mahu järgi. See on täpsem viskoossete lahuste puhul (nagu glütseroolstoksid) või kallite reaktiivide puhul, kus täpsus on olulisem kui kiirus. Põhimõte on sama, kuid mõõdate pipeteerimise asemel kaalu.
Kui töötlete sadu proove või vajate äärmiselt head reprodutseeritavust, on automatiseeritud vedelikukäitlejad väärt investeeringut. Need on standardsed farmaatsialaborites ja kõrge läbilaskevõimega uurimisasutustes. Miinuseks on maksumus ja aeg, mis kulub meetodite programmeerimiseks ja valideerimiseks.
Enamikus akadeemilistes ja väikestes tööstuslaborites toimib käsitsi seerialine lahjendamine hea tehnikaga täiesti hästi.
Lisaks varem käsitletud praktilistele tehnikatele, siin on arvutus- ja mõistelised vead, mis inimesi segadusse viivad:
Lahjenduse faktori vs. lahjendussuhte segadus: Seda väärib kordamist, sest see on levinud veakoht. "1:10 lahjendus" tähendab lahjenduse faktorit 10, mis tähendab 1 osa proovi + 9 osa lahjendit. See EI tähenda 1 osa proovi + 10 osa lahjendit (see oleks 1:11 ehk lahjenduse faktor 11).
Eksponentsiaalse seose unustamine: Pärast 3 sammu 1:10 lahjendust on teie kontsentratsioon 1000× madalam, mitte 30× madalam. Lahjenduse faktor tõstetakse astmesse vastavalt sammude arvule: LF^n.
Ühikute mittevastavus: Ühikute segamine on kiire tee valede vastusteni. Kui teie algne kontsentratsioon on mg/mL ja lõpuks vajate μg/mL, konverteerige selgelt ja kirjutage see üles. Kontrollige ühikud enne pipeteerimist üle.
Ümardamisvead mitmesammulistes arvutustes: Kontsentratsioonide käsitsi arvutamisel võivad ümardamised iga sammu juures tekitada märkimisväärse vea lõplikus lahjenduses. Kasutage kas rohkem kümnendkohti või arvutage lõplik kontsentratsioon otse valemist K_n = K₀/LF^n.
Aktsepteeritav viga sõltub teie rakendustest. Bakterite plaadiloendustes võib lubada ±10% viga, kuna tavaliselt töötate sadade kolooniatega. Farmaatsiastandardid nõuavad sageli ±2% või paremat täpsust, sest patsiendi annustamine sõltub sellest. Teadke oma nõudeid ja valideerige oma tehnika vastavalt.
Tehke valideerimissari värvilise värvaine või valgulahusega, kui õpite esmakordselt või koolitatate uusi laboriliikmeid. Saate visuaalselt kontrollida, et iga lahjendus on eelmisest heledam, ja veenduda lõplikes kontsentratsioonides spektrofotomeetriliselt. See suurendab kindlustunnet ja paljastab süstemaatilised tehnikavead enne nende mõju reaalsetele katsetele.
Seeriline lahjendus mikrobioloogias on tehnika, kus proovi lahjendatakse korduvalt püsiva teguriga. Iga lahjendus kasutab eelmist lähtepunktina, luues järjestikku madalamaid kontsentratsioone. Mikrobioloogid kasutavad seda bakterikolooniate loendamiseks (millionitest milliliitrites loendatavate arvudeni), antibiootikumide testimiseks erinevatel kontsentratsioonidel ja kultuuride ettevalmistamiseks töödeldavates kontsentratsioonides.
Kasutage valemit: C_n = C_0 / (DF^n), kus C_0 on algne kontsentratsioon, DF on lahjenduse tegur ja n on sammude arv. Näiteks, alustades 100 mg/mL-st lahjenduse teguriga 10 ja 3 sammuga: 100 / (10³) = 100 / 1000 = 0,1 mg/mL. Kalkulaator sellel lehel teeb selle arvutuse teile automaatselt.
See ajab inimesi sageli segadusse. Lahjendussuhe (nagu "1:10") näitab proportsiooni: 1 osa proovi 10 osa kogumahust. Selle saavutamiseks lisate 1 osa proovi 9 osale lahjendajale. Lahjenduse tegur on lihtsalt 10 (kui mitu korda see lahjemaks muutub). Seega 1:10 suhe võrdub lahjenduse teguriga 10.
Kaks põhjust: täpsus ja ulatus. On lihtsam täpselt pipeteerida 1 mL viis korda kui 0,01 mL üks kord. Samuti võimaldab seeriline lahjendus katta tohutut kontsentratsiooni vahemikku — kümnekordsed lahjendused 6 sammuga annavad miljonkordse vahemiku, mida oleks võimatu saavutada ühe sammuga.
Hea tehnika ja kalibreeritud pipettidega võite saavutada tavaliselt 5-10% täpsuse. See sobib enamikuks mikrobioloogia tööks (bakterite loendamine, MIC testimine). Kui vajate paremat täpsust (nagu ±2% farmaatsiastandardite jaoks), kaaluge paralleelset lahjendust või automatiseeritud vedelikukäitlejaid. Täpsus halveneb sammude lisandudes, kuna vead kuhjuvad.
Enamik protokolle piirdub 6-10 sammuga. Selle taga hakkavad kumulatiivsed vead märgatavalt kuhjuma. Kui vajate äärmuslikumat lahjendust, kasutage suuremat lahjenduse tegurit (nagu 1:100) pigem kui lisada rohkem samme. Näiteks kolm 1:100 sammu viib teid 10⁻⁶-ni, mis võtaks kuus sammu 1:10 puhul.
Tehniliselt jah, aga see muudab nii teostuse kui ka matemaatika keerulisemaks. Enamik laboratooriume kasutab lihtsuse ja reprodutseeritavuse nimel püsivat lahjenduse tegurit. Ainus kord, kus ma olen näinud muutuvaid tegureid edukalt kasutatavat, on siis, kui keegi vajab ühes kontsentratsiooni vahemikus peenemat eraldusvõimet ja mujal jämedamaid samme — aga isegi siis on tavaliselt lihtsam lihtsalt kaks eraldi seeriat läbi viia.
See sõltub sellest, mida vajate:
Valige vastavalt oma kontsentratsiooni vahemikule ja vajalike andmepunktide arvule.
Lahjendust on keemias ja meditsiinis kasutatud juba sajandeid, kuid süstemaatiline lähenemine, mida me täna kasutame, tekkis modernse mikrobioloogia käigus 1800ndate lõpus.
Robert Koch pioneris kvantitatiivset bakterioloogiat 1880ndatel, arendades tehnikaid bakterikolooniate isoleerimiseks ja loendamiseks. Tema töö tuberkuloosi ja koolera alal nõudis meetodeid bakteriaalsete kontsentratsioonidega töötamiseks millionitest milliliitris kuni üksikute rakkudeni - seerialahjendus tegi selle võimalikuks. Koch'i lähenemine sai aluseks plaadil loendamise meetodile, mida kasutatakse tänaseni.
Tõeline murrang toimus 1960ndatel ja 1970ndatel Heinrich Schnitgeri poolt õhku nihutava mikropipi leiutamisega. Äkki said uurijad täpselt mõõta mikroliitrites, mitte ainult milliliitrites. See täpsus avas täiesti uued valdkonnad - molekulaarbioloogia, ELISA immuunanalüüsid ja PCR sõltuvad kõik täpsest pipeteerimisest.
Kaasaegsed laborid kasutavad üha enam automatiseeritud vedelikukäitlejaid kõrge läbilaskevõimega töös, kuid aluseks olevad põhimõtted on samad, mida Koch kasutas 140 aastat tagasi: süstemaatiline, astmeline lahjendamine kontsentratsioonivahemike jaoks, mida muidu poleks võimalik otse mõõta.
Standardid ja ametlikud juhised:
Kliiniliste ja Laboratoorsete Standardite Instituut (CLSI) - M07: Meetodid antimikroobse tundlikkuse lahjendamise testideks. Definitiivne standard MIK testimiseks ja seeriaviisilisteks lahjendamisteks kliinilises mikrobioloogias.
ISO 8655 Standard - Kolbmõõtmisaparaadid. Rahvusvaheline standard pipettide täpsuse ja kalibreerimise nõuetele.
USA Farmakopöa (USP) - Üldpeatükk <1225> kompendiaalsete protseduuride valideerimisest, sealhulgas lahjendamistehnikatest farmaatsiatoodetes.
WHO Laboratoorse Kvaliteedijuhtimise Süsteemi Käsiraamat - Sisaldab protokolle seeriaviisilisteks lahjendamisteks rahvatervise ja kliinilistes laborites.
Teaduslik taust:
Ameerika Mikrobioloogia Selts (ASM) - Ressursid mikrobioloogilistest meetoditest ja laboratoorsetest tehnikatest.
Madigan, M. T., jt. (2018). Brock Mikroorganismide Bioloogia (15. väljaanne). Põhjalik ülevaade kvantitatiivsetest mikrobioloogilistest tehnikatest.
Sambrook, J., & Russell, D. W. (2001). Molekulaarne Kloneerimine: Laboratoorne Käsiraamat (3. väljaanne). Cold Spring Harbor Laboratory Press. Standardne viide molekulaarbioloogia lahjendusprotokollide kohta.
Need allikad pakuvad standardiseeritud protokolle, kvaliteedistandardeid ja valideerimise juhiseid seeriaviisilisteks lahjendamisteks erinevates rakendustes.
Seeriline lahjendamine on üks nendest põhilistest tehnikatest, mida kasutate pidevalt laboris - olgu tegemist mikrobioloogia, biokeemia, farmakoloogia või molekulaarbioloogiaga. Matemaatika ise on lihtne, kuid kui te planeerite katseid, koolitada uusi laboriliikmeid või töötate läbi mitme protokolli korraga, on kalkulaator, mis näitab kogu lahjendusseeriat ühe pilguga, ajasäästlik ja vigu ennetav.
See tööriist on eriti kasulik, kui:
Kalkulaator tegeleb eksponentsiaalse matemaatikaga ja näitab teile täieliku seeria, võimaldades teil keskenduda laborile endale, mitte arvutustele. Kas te lahjendaksite bakterikultuure plaadiloendusteks, valmistaksite ravimikontsentratsioone doosi-vastuse kõverateks või seadistaksite standardkõveraid valkude määramiseks, on täpsed kontsentratsiooniarvutused hädavajalikud - ja see tööriist muudab need kiiremaks ja usaldusväärsemaks.
Avasta rohkem tööriistu, mis võivad olla kasulikud teie töövoos